熒光探針優(yōu)點是：一方面可以被氬離子激光(argon-ion laser)的488nm激發(fā)光激發(fā)，便于檢測；另一方面，和鈣離子結合后熒光變化更強，即對鈣離子濃度變化的檢測更加靈敏；同時，和鈣離子的結合能力較弱，這樣可以比Fura-2檢測到細胞內(nèi)更高濃度的鈣離子水平；此外，對于細胞內(nèi)的鈣離子的即時變化反應得更加準確，減小了因為和鈣離子解離速度慢而導致的熒光變化滯后。
熒光探針使用方法(僅作參考)
以下步驟是來源于大量文獻總結的簡易操作流程，僅作參考。用戶需根據(jù)特定的應用和敏感性來做調(diào)整。
1)將低溫保存的凍干粉取出回至室溫，低速離心使粉末落到瓶底。之后加入適量無水DMSO或其他有機溶劑配制成1-10mM儲存液。未用完的DMSO儲存液需分裝并避光凍存在-20℃，避免反復凍融。
2)于正式實驗前，用生理鹽緩沖液(比如：PBS，HBSS，HEPES)稀釋到工作濃度1-10μM。需根據(jù)具體應用來調(diào)整合適的工作濃度。
3)吸走培養(yǎng)液，加入步驟2)配制的染色工作液到細胞內(nèi)，室溫或30℃孵育5~60min。
4)吸走染色工作液，用預熱的生理緩沖液或細胞培養(yǎng)液清洗一遍。重新加入預熱的生理緩沖液或細胞培養(yǎng)液，在適宜溫度內(nèi)孵育。對于二乙酸酯衍生物，需要短暫復原時間讓細胞內(nèi)酯酶將其水解，從而讓染料對氧化應激產(chǎn)生反應。復原時間范圍很廣，由于某些細胞類型通常顯示極其低水平的酯酶活性。
5)將細胞暴露于實驗刺激物之前，先測定加載細胞的背景熒光強度。
6)根據(jù)以下情況評估陰性對照(Negativecontrol)
6.1 綠色發(fā)射光譜內(nèi)檢查未染色細胞的自熒光情況。
6.2 對于流式分析，查明染料加載和處理后細胞的前向角散射和側向角散射是不變。細胞尺寸的變化可能與起泡或萎縮有關，由于處理或有毒反應引起的。
6.3 對包含和不包含刺激物的染料和緩沖液/培養(yǎng)基的無細胞混合物進行熒光檢測。在不含細胞外酯酶和其他氧化酶的情況下，隨著時間熒光的逐漸增加可能與瞬間水解、空氣氧化、和/或光誘導氧化有關。
6.4 檢查培養(yǎng)在生長培養(yǎng)液或簡單緩沖液內(nèi)的未處理加載細胞(對照)的熒光。在健康細胞內(nèi)，細胞內(nèi)酶和/或天然抗氧化劑會清除這些氧自由基。經(jīng)過染料加載復原時間后，健康細胞應該表現(xiàn)出低水平的熒光信號，且在整個實驗期間相對穩(wěn)定。然而，逐漸增加(由于自氧化)或降低(由于細胞內(nèi)染料喪失或光淬滅)也有可能觀察到。在不含任何刺激物或誘導劑的體系內(nèi)，健康和未處理細胞突然發(fā)現(xiàn)強熒光，表明細胞發(fā)生死亡或一些其他的氧化事件。
7)建立陽性對照(Positivecontrol)，可能用以下方法刺激氧化活性：
7.1 腫瘤促進劑(PMA，工作濃度100pM~10μM)
7.2 H2O2或TBHP(終濃度~100μM)(根據(jù)細胞本身對其的靈敏度和反應性來提高或降低濃度)
8)確保刺激藥物或化合物不會引起染料熒光淬滅。檢查化合物的吸收光譜，確定化合物的吸收峰不會與氧化后染料的大激發(fā)或發(fā)射光譜發(fā)生重疊。
保存條件：
-20℃避光保存，6個月有效。
熒光探針使用注意事項：
本Fluo-3 AM在4℃、冰浴等較低溫度情況下會凝固而粘在離心管管底、管壁或管蓋內(nèi)，可以20-25℃水浴溫育片刻至全部融解后使用。
熒光染料均存在淬滅問題，請盡量注意避光，以減緩熒光淬滅。
本產(chǎn)品僅限于專業(yè)人員的科學研究用，不得用于臨床診斷或治療，不得用于食品或藥品，不得存放于普通住宅內(nèi)。為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套操作。
